eng
Выпуск #6/2024
А.И.Ахметова, А.Д.Терентьев, А.И.Федосеев, Д.И.Яминский, И.В.Яминский
СКАНИРУЮЩАЯ КАПИЛЛЯРНАЯ МИКРОСКОПИЯ ДЛЯ БИОЛОГИЧЕСКИХ ПРИМЕНЕНИЙ
СКАНИРУЮЩАЯ КАПИЛЛЯРНАЯ МИКРОСКОПИЯ ДЛЯ БИОЛОГИЧЕСКИХ ПРИМЕНЕНИЙ
Просмотры: 943
Получено: 5.08.2024 г. | Принято: 9.08.2024 г. | DOI: https://doi.org/10.22184/1993-8578.2024.17.6.364.370
Научная статья
СКАНИРУЮЩАЯ КАПИЛЛЯРНАЯ МИКРОСКОПИЯ
ДЛЯ БИОЛОГИЧЕСКИХ ПРИМЕНЕНИЙ
А.И.Ахметова1, 2, к.ф.-м.н., науч. сотр., вед. спец., ORCID: 0000-0002-5115-8030
А.Д.Терентьев1, 2, магистр, программист, ORCID: 0009-0009-1528-5284
А.И.Федосеев1, д.ф.-м.н., проф., ORCID: 0009-0007-7282-1093
Д.И.Яминский1, асп., ORCID: 0009-0009-6370-7496
И.В.Яминский1, 2, д.ф.-м.н., проф., ген. дир., ORCID: 0000-0001-8731-3947 / yaminsky@nanoscopy.ru
Аннотация. Сканирующая капиллярная микроскопия – оптимальный инструмент для бесконтактной визуализации живых клеток и измерения их механических свойств. Капиллярную микроскопию все чаще используют для исследования межклеточных контактов, для оценки морфологии при разных условиях роста клеточной культуры, для визуализации и измерения топографии срезов тканей. Бесконтактная визуализация без использования меток и фиксации, возможность исследования в жидких средах с высоким пространственным разрешением, проведение длительных экспериментов с живыми объектами делают капиллярную микроскопию важным и актуальным инструментом в современных исследованиях. Поэтому совершенствование устройства капиллярного микроскопа, внутренней архитектуры, механики, электроники и программного обеспечения представляет особый интерес.
Ключевые слова: сканирующая капиллярная микроскопия, живая материя, биомеханика, живые клетки
Для цитирования: А.И. Ахметова, А.Д. Терентьев, А.И. Федосеев, Д.И. Яминский, И.В. Яминский. Сканирующая капиллярная микроскопия для биологических применений. НАНОИНДУСТРИЯ. 2024. Т. 17. № 6. С. 364–370. https://doi.org/10.22184/1993-8578.2024.17.6.364.370.
Received: 5.08.2024 | Accepted: 9.08.2024 | DOI: https://doi.org/10.22184/1993-8578.2024.17.6.364.370
Original paper
SCANNING CAPILLARY MICROSCOPY FOR BIOLOGICAL APPLICATIONS
A.I.Akhmetova1, 2, Researcher, Leading Specialist, ORCID: 0000-0002-5115-8030
A.D.Terentyev1, 2, Master, Programmer, ORCID: 0009-0009-1528-5284
A.I.Fedoseev1, Doct. of Sci. (Physics and Mathematics), Prof., ORCID: 0009-0007-7282-1093
D.I.Yaminsky1, Post-Graduate, ORCID: 0009-0009-6370-7496
I.V.Yaminsky1, 2, Doct. of Sci. (Physics and Mathematics), Prof., Director General, ORCID: 0000-0001-8731-3947 /
yaminsky@nanoscopy.ru
Abstract. Scanning capillary microscopy is an optimal tool for contactless visualization of living cells and measurement of their mechanical properties. Capillary microscopy is increasingly used to study intercellular contacts, to assess morphology under different growth conditions of cell culture, to visualize and measure the topography of tissue sections. Contactless visualization without the use of labels and fixation, the possibility of research in liquid media with high spatial resolution, and long-term experiments with living objects make capillary microscopy an important and relevant tool in modern research. Therefore, the improvement of device of a capillary microscope, its internal architecture, mechanics, electronics, and software are of particular interest.
Keywords: scanning capillary microscopy, living matter, biomechanics, platelets, stem cells
For citation: A.I.Akhmetova, A.D.Terentyev, A.I.Fedoseev, D.I.Yaminsky, I.V.Yaminsky. Scanning capillary microscopy for biological applications. NANOINDUSTRY. 2024. Vol. 17. No. 6. PP. 364–370. https://doi.org/
10.22184/1993-8578.2024.17.6.364.370.
ВВЕДЕНИЕ
Применение сканирующей капиллярной микроскопии (СКМ) в биомедицинских исследованиях активно развивается в последние годы. СКМ использовали для изучения клеточных взаимодействий в живых клетках с высоким пространственно-временным разрешением. В работе [1] объединили два метода – сканирующую капиллярную микроскопию и оптогенетическое исследование. Данный подход позволяет выявить степень межклеточных контактов и динамические изменения с течением времени, не видимые с помощью оптической микроскопии. Полученные в работе результаты актуальны для анализа состояний сердечных заболеваний.
CКМ использовалась для визуализации in situ клеток, растущих на гидрогеле [2]. Было показано, что определенные концентрации флуоресцентного красителя Т модулируют путь самосборки и изменяют морфологию и механические свойства гидрогеля; также анализировалось образование гидрогеля в присутствии тиофлавина Т. Измерения показали, что форма клеток, выращенных на гидрогеле, значительно отличалась от выращенных на чашке Петри. Клетки, выращенные в гидрогеле, имели более сферическую форму, в то время как клетки, выращенные на чашке Петри, были более распластанными. Таким образом, гидрогель лучше имитирует физиологическую среду клеток.
Были получены изображения отдельных коллагеновых фибрилл; однако для этого сухожилие взрослых крыс помещали на стеклянную поверхность и высушивали в течение ночи, после чего образец погружали в физиологический раствор [3].
В работе [4] исследовали влияние двух водорастворимых фуллеренов на поверхностную ультраструктуру и функцию макрофагов. Результаты показали, что эти фуллерены будут перспективными ингибиторами фагоцитоза, а СКМ является отличным инструментом для изучения морфологии адгезивных и хрупких образцов.
МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
Сканирующая капиллярная микроскопия находит широкое применение для наблюдения биологических объектов – клеток и живой материи с нанометровым пространственным разрешением.
Для удобной и эффективной работы биологов аппаратура должна удовлетворять ряду требований:
наличие простого и интуитивно понятного программного интерфейса управления микроскопом;
обязательное сопряжение с оптическим микроскопом;
наличие расширенного набора методов обработки, построения, анализа и сохранения экспериментальных данных.
В работе представлены описания трех вариантов исполнения сканирующих капиллярных микроскопов "ФемтоСкан Х Айон".
На рис.1 представлен вариант сканирующего капиллярного микроскопа, размещенный на инвертированном оптическом микроскопе Nikon Ti-U c 40-кратным объективом. Такое сочетание позволяет уверенно контролировать сближение капилляра с поверхностью клетки, визуально наблюдать клетки. В одном из окуляров есть возможность установки цифровой камеры высокого разрешения.
На рис.2 представлена компактная версия сканирующего капиллярного микроскопа "ФемтоСкан Х Айон". В этом решении имеется встроенный цифровой микроскоп с автоматизированной настройкой фокуса. Также микроскоп оснащен прецизионной двухкоординатной платформой перемещения по координатам Х и Y с использованием шаговых двигателей.
На рис.3 представлена механическая система микроскопа, также оснащенная двухкоординатной платформой перемещения по координатам Х и Y. Вертикальное перемещение выполнено с помощью высокоточного серводвигателя, обеспечивающего минимальный шаг по Z на уровне десятка нанометра. На этой механической системе позиционирования может быть размещена как измерительная головка сканирующего капиллярного микроскопа, так и атомно-силового микроскопа.
Управление микроскопом может быть осуществлено двумя различными вариантами:
Прецизионной электроникой "ФемтоСкан Х" с применением 20-разрядных высокоскоростных аналого-цифровых и цифроаналоговых преобразователей, синтезатора частот в диапазоне до 100 МГц, синхронных детекторов, драйверов шаговых двигателей. Управляющие сигналы формируются ПЛИС Xilinx Spartan 6 с емкостью 150 К слайсов.
Многофункциональной электроникой "ФемтоСкан", успешно апробированной на передовых моделях сканирующего зондового микроскопа "ФемтоСкан". Управление электроникой ведет сигнальный процессор Analog Devices ADSP2171.
Программное обеспечение для аппаратной ПЛИС XILINX написано в VHDL, для верхнего уровня – в кросс-платформенной системе Qt. Пример интерфейса пользователя представлен на рис.4. Он предусматривает несколько различных вариантов сканирования – поточечного, флирт-моды, умного перемещения. Режимы осциллографа, измерение зависимостей ионного тока от времени, приложенного напряжения, пройденного капилляром расстояния и частоты приложенного напряжения существенно расширяют функционал микроскопа при детальном изучении морфологии биологических объектов.
В случае использования сигнального процессора Analog Devices ADSP2171 алгоритмы управляющих сигналов написаны на ассемблере и языках С и С++. Этот вариант развивался и усовершенствовался на протяжении последних тридцати лет.
Полнофункциональный анализ и обработка данных во всех случаях проводится в программном обеспечении "ФемтоСкан Онлайн" [5]. Пробная версия доступна на сайте femtoscan.ru. На рис.5 представлен интерфейс программы для обработки данных.
ВЫВОДЫ
В представленных версиях сканирующих капиллярных микроскопов используются планарные сканеры, обеспечивающие необходимый для биологии широкий диапазон перемещений по координатам X и Y в 50–100 мкм, и диапазон по координате Z – 10–30 мкм. При этом достигаемая точность перемещений – доли нм, а частота перемещений – до 7 кГц.
С помощью указанных выше установок сканирующей капиллярной микроскопии были исследованы срезы ткани Substantia nigra донора без неврологических патологий и больного Паркинсоном. Визуально показано, что срезы ткани донора без неврологических патологий имеют более разветвленную и более шероховатую поверхность по сравнению с образцами от больного Паркинсоном [6].
Для достоверного использования созданных версий микроскопов нами разработаны физические принципы нанометрологии, позволяющие проводить настройку и поверку разрабатываемой аппаратуры. При этом в качестве калибровочных мер также могут быть использованы биологические объекты. В качестве такого объекта нами предложены частицы вируса табачной мозаики. Другие эффективные меры описаны в публикациях [7, 8].
Сканирующие капиллярные микроскопы "ФемтоСкан Х Айон" активно используются в проектной работе Центра молодежного инновационного творчества "Нанотехнологии" физического факультета МГУ имени М.В. Ломоносова для наблюдения клеток и живой материи.
БЛАГОДАРНОСТИ
Работа выполнена по госзаданию при финансовой поддержке физического факультета МГУ имени М.В. Ломоносова (Регистрационная тема 122091200048-7). ПО "ФемтоСкан Онлайн" предоставлено ООО НПП "Центр перспективных технологий" www.nanoscopy.ru.
Благодарность Прохорову А.Н. и Белову Ю.К. за разработку механики микроскопов, Евстифееву С.Ф., Орешкину С.И. и Пановой С.М. за усовершенствование электроники, Максимовой Н.А. и Корнилову Д.В. за работу над управляющей программой ПЛИС, Советникову Т.О. за полученные изображения черной субстанции мозга человека.
ИНФОРМАЦИЯ О РЕЦЕНЗИРОВАНИИ
Редакция благодарит анонимного рецензента (рецензентов) за их вклад в рецензирование этой работы, а также за размещение статей на сайте журнала и передачу их в электронном виде в НЭБ eLIBRARY.RU.
Декларация о конфликте интересов. Авторы заявляют об отсутствии конфликтов интересов или личных отношений, которые могли бы повлиять на работу, представленную в данной статье.
ЛИТЕРАТУРА / REFERENCES
Song Q, Alvarez-Laviada A., Schrup S.E., Reilly-O’Donnell B., Entcheva E., Gorelik J. Opto-SICM framework combines optogenetics with scanning ion conductance microscopy for probing cell-to-cell contacts. Commun Biol. 2023. Nov 8. Vol. 6(1). PP. 1131. https://doi.org/10.1038/s42003-023-05509-3
Tikhonova T.N., Kolmogorov V.S., Timoshenko R.V., Vaneev A.N., Cohen-Gerassi D., Osminkina L.A., Gorelkin P.V., Erofeev A.S., Sysoev N.N., Adler-Abramovich L. et al. Sensing Cells-Peptide Hydrogel Interaction In Situ via Scanning Ion Conductance Microscopy. Cells. 2022. Vol. 11(24). P. 4137. https://doi.org/10.3390/cells11244137
Ushiki T., Nakajima M., Choi M., Cho S.J., Iwata F. Scanning ion conductance microscopy for imaging biological samples in liquid: A comparative study with atomic force microscopy and scanning electron microscopy. Micron 2012. Vol. 43. PP. 1390–1398.
Ruan H., Zhang X., Yuan J., Fang X. Effect of water-soluble fullerenes on macrophage surface ultrastructure revealed by scanning ion conductance microscopy. RSC Ad. v. 2022. Aug 10. Vol. 12(34). PP. 22197–22201. https://doi.org/10.1039/d2ra02403a
Akhmetova A.I., Yaminsky D.I., Yaminsky I.V. Femtoscan Online: Image Processing and Filtering. NANOINDUSTRY. Vol. 17. No. 3-4. 2024. PP. 178–183. https://doi.org/10.22184/1993-8578.2024.17.3-4.178.183
Akhmetova A.I., Sovetnikov T.O., Zorikova E.O., Yaminsky I.V. Scanning probe microscopy of substantia nigra. NANOINDUSTRY. Vol. 17. No. 1. 2024. PP. 26–31. https://doi.org/10.22184/1993-8578.2024.17.1.26.31
Akhmetova A.I., Terentyev A.D., Senotrusova S.A., Sovetnikov T.O., Yaminsky D.I., Popov V.V., Yaminsky I.V. Diffraction grating as a means of metrological support of microscopy. NANOINDUSTRY. Vol. 17. No. 2. 2024. PP. 128–133. https://doi.org/
10.22184/1993-8578.2024.17.2.98.105
Akhmetova A.I., Sovetnikov T.O., Loginov B.A., Yaminsky D.I., Yaminsky I.V. Quartz reference measure for scanning probe microscopy. NANOINDUSTRY. Vol. 17. No. 2. 2024. PP. 98–105. https://doi.org/
10.22184/1993-8578.2024.17.2.98.105
Научная статья
СКАНИРУЮЩАЯ КАПИЛЛЯРНАЯ МИКРОСКОПИЯ
ДЛЯ БИОЛОГИЧЕСКИХ ПРИМЕНЕНИЙ
А.И.Ахметова1, 2, к.ф.-м.н., науч. сотр., вед. спец., ORCID: 0000-0002-5115-8030
А.Д.Терентьев1, 2, магистр, программист, ORCID: 0009-0009-1528-5284
А.И.Федосеев1, д.ф.-м.н., проф., ORCID: 0009-0007-7282-1093
Д.И.Яминский1, асп., ORCID: 0009-0009-6370-7496
И.В.Яминский1, 2, д.ф.-м.н., проф., ген. дир., ORCID: 0000-0001-8731-3947 / yaminsky@nanoscopy.ru
Аннотация. Сканирующая капиллярная микроскопия – оптимальный инструмент для бесконтактной визуализации живых клеток и измерения их механических свойств. Капиллярную микроскопию все чаще используют для исследования межклеточных контактов, для оценки морфологии при разных условиях роста клеточной культуры, для визуализации и измерения топографии срезов тканей. Бесконтактная визуализация без использования меток и фиксации, возможность исследования в жидких средах с высоким пространственным разрешением, проведение длительных экспериментов с живыми объектами делают капиллярную микроскопию важным и актуальным инструментом в современных исследованиях. Поэтому совершенствование устройства капиллярного микроскопа, внутренней архитектуры, механики, электроники и программного обеспечения представляет особый интерес.
Ключевые слова: сканирующая капиллярная микроскопия, живая материя, биомеханика, живые клетки
Для цитирования: А.И. Ахметова, А.Д. Терентьев, А.И. Федосеев, Д.И. Яминский, И.В. Яминский. Сканирующая капиллярная микроскопия для биологических применений. НАНОИНДУСТРИЯ. 2024. Т. 17. № 6. С. 364–370. https://doi.org/10.22184/1993-8578.2024.17.6.364.370.
Received: 5.08.2024 | Accepted: 9.08.2024 | DOI: https://doi.org/10.22184/1993-8578.2024.17.6.364.370
Original paper
SCANNING CAPILLARY MICROSCOPY FOR BIOLOGICAL APPLICATIONS
A.I.Akhmetova1, 2, Researcher, Leading Specialist, ORCID: 0000-0002-5115-8030
A.D.Terentyev1, 2, Master, Programmer, ORCID: 0009-0009-1528-5284
A.I.Fedoseev1, Doct. of Sci. (Physics and Mathematics), Prof., ORCID: 0009-0007-7282-1093
D.I.Yaminsky1, Post-Graduate, ORCID: 0009-0009-6370-7496
I.V.Yaminsky1, 2, Doct. of Sci. (Physics and Mathematics), Prof., Director General, ORCID: 0000-0001-8731-3947 /
yaminsky@nanoscopy.ru
Abstract. Scanning capillary microscopy is an optimal tool for contactless visualization of living cells and measurement of their mechanical properties. Capillary microscopy is increasingly used to study intercellular contacts, to assess morphology under different growth conditions of cell culture, to visualize and measure the topography of tissue sections. Contactless visualization without the use of labels and fixation, the possibility of research in liquid media with high spatial resolution, and long-term experiments with living objects make capillary microscopy an important and relevant tool in modern research. Therefore, the improvement of device of a capillary microscope, its internal architecture, mechanics, electronics, and software are of particular interest.
Keywords: scanning capillary microscopy, living matter, biomechanics, platelets, stem cells
For citation: A.I.Akhmetova, A.D.Terentyev, A.I.Fedoseev, D.I.Yaminsky, I.V.Yaminsky. Scanning capillary microscopy for biological applications. NANOINDUSTRY. 2024. Vol. 17. No. 6. PP. 364–370. https://doi.org/
10.22184/1993-8578.2024.17.6.364.370.
ВВЕДЕНИЕ
Применение сканирующей капиллярной микроскопии (СКМ) в биомедицинских исследованиях активно развивается в последние годы. СКМ использовали для изучения клеточных взаимодействий в живых клетках с высоким пространственно-временным разрешением. В работе [1] объединили два метода – сканирующую капиллярную микроскопию и оптогенетическое исследование. Данный подход позволяет выявить степень межклеточных контактов и динамические изменения с течением времени, не видимые с помощью оптической микроскопии. Полученные в работе результаты актуальны для анализа состояний сердечных заболеваний.
CКМ использовалась для визуализации in situ клеток, растущих на гидрогеле [2]. Было показано, что определенные концентрации флуоресцентного красителя Т модулируют путь самосборки и изменяют морфологию и механические свойства гидрогеля; также анализировалось образование гидрогеля в присутствии тиофлавина Т. Измерения показали, что форма клеток, выращенных на гидрогеле, значительно отличалась от выращенных на чашке Петри. Клетки, выращенные в гидрогеле, имели более сферическую форму, в то время как клетки, выращенные на чашке Петри, были более распластанными. Таким образом, гидрогель лучше имитирует физиологическую среду клеток.
Были получены изображения отдельных коллагеновых фибрилл; однако для этого сухожилие взрослых крыс помещали на стеклянную поверхность и высушивали в течение ночи, после чего образец погружали в физиологический раствор [3].
В работе [4] исследовали влияние двух водорастворимых фуллеренов на поверхностную ультраструктуру и функцию макрофагов. Результаты показали, что эти фуллерены будут перспективными ингибиторами фагоцитоза, а СКМ является отличным инструментом для изучения морфологии адгезивных и хрупких образцов.
МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
Сканирующая капиллярная микроскопия находит широкое применение для наблюдения биологических объектов – клеток и живой материи с нанометровым пространственным разрешением.
Для удобной и эффективной работы биологов аппаратура должна удовлетворять ряду требований:
наличие простого и интуитивно понятного программного интерфейса управления микроскопом;
обязательное сопряжение с оптическим микроскопом;
наличие расширенного набора методов обработки, построения, анализа и сохранения экспериментальных данных.
В работе представлены описания трех вариантов исполнения сканирующих капиллярных микроскопов "ФемтоСкан Х Айон".
На рис.1 представлен вариант сканирующего капиллярного микроскопа, размещенный на инвертированном оптическом микроскопе Nikon Ti-U c 40-кратным объективом. Такое сочетание позволяет уверенно контролировать сближение капилляра с поверхностью клетки, визуально наблюдать клетки. В одном из окуляров есть возможность установки цифровой камеры высокого разрешения.
На рис.2 представлена компактная версия сканирующего капиллярного микроскопа "ФемтоСкан Х Айон". В этом решении имеется встроенный цифровой микроскоп с автоматизированной настройкой фокуса. Также микроскоп оснащен прецизионной двухкоординатной платформой перемещения по координатам Х и Y с использованием шаговых двигателей.
На рис.3 представлена механическая система микроскопа, также оснащенная двухкоординатной платформой перемещения по координатам Х и Y. Вертикальное перемещение выполнено с помощью высокоточного серводвигателя, обеспечивающего минимальный шаг по Z на уровне десятка нанометра. На этой механической системе позиционирования может быть размещена как измерительная головка сканирующего капиллярного микроскопа, так и атомно-силового микроскопа.
Управление микроскопом может быть осуществлено двумя различными вариантами:
Прецизионной электроникой "ФемтоСкан Х" с применением 20-разрядных высокоскоростных аналого-цифровых и цифроаналоговых преобразователей, синтезатора частот в диапазоне до 100 МГц, синхронных детекторов, драйверов шаговых двигателей. Управляющие сигналы формируются ПЛИС Xilinx Spartan 6 с емкостью 150 К слайсов.
Многофункциональной электроникой "ФемтоСкан", успешно апробированной на передовых моделях сканирующего зондового микроскопа "ФемтоСкан". Управление электроникой ведет сигнальный процессор Analog Devices ADSP2171.
Программное обеспечение для аппаратной ПЛИС XILINX написано в VHDL, для верхнего уровня – в кросс-платформенной системе Qt. Пример интерфейса пользователя представлен на рис.4. Он предусматривает несколько различных вариантов сканирования – поточечного, флирт-моды, умного перемещения. Режимы осциллографа, измерение зависимостей ионного тока от времени, приложенного напряжения, пройденного капилляром расстояния и частоты приложенного напряжения существенно расширяют функционал микроскопа при детальном изучении морфологии биологических объектов.
В случае использования сигнального процессора Analog Devices ADSP2171 алгоритмы управляющих сигналов написаны на ассемблере и языках С и С++. Этот вариант развивался и усовершенствовался на протяжении последних тридцати лет.
Полнофункциональный анализ и обработка данных во всех случаях проводится в программном обеспечении "ФемтоСкан Онлайн" [5]. Пробная версия доступна на сайте femtoscan.ru. На рис.5 представлен интерфейс программы для обработки данных.
ВЫВОДЫ
В представленных версиях сканирующих капиллярных микроскопов используются планарные сканеры, обеспечивающие необходимый для биологии широкий диапазон перемещений по координатам X и Y в 50–100 мкм, и диапазон по координате Z – 10–30 мкм. При этом достигаемая точность перемещений – доли нм, а частота перемещений – до 7 кГц.
С помощью указанных выше установок сканирующей капиллярной микроскопии были исследованы срезы ткани Substantia nigra донора без неврологических патологий и больного Паркинсоном. Визуально показано, что срезы ткани донора без неврологических патологий имеют более разветвленную и более шероховатую поверхность по сравнению с образцами от больного Паркинсоном [6].
Для достоверного использования созданных версий микроскопов нами разработаны физические принципы нанометрологии, позволяющие проводить настройку и поверку разрабатываемой аппаратуры. При этом в качестве калибровочных мер также могут быть использованы биологические объекты. В качестве такого объекта нами предложены частицы вируса табачной мозаики. Другие эффективные меры описаны в публикациях [7, 8].
Сканирующие капиллярные микроскопы "ФемтоСкан Х Айон" активно используются в проектной работе Центра молодежного инновационного творчества "Нанотехнологии" физического факультета МГУ имени М.В. Ломоносова для наблюдения клеток и живой материи.
БЛАГОДАРНОСТИ
Работа выполнена по госзаданию при финансовой поддержке физического факультета МГУ имени М.В. Ломоносова (Регистрационная тема 122091200048-7). ПО "ФемтоСкан Онлайн" предоставлено ООО НПП "Центр перспективных технологий" www.nanoscopy.ru.
Благодарность Прохорову А.Н. и Белову Ю.К. за разработку механики микроскопов, Евстифееву С.Ф., Орешкину С.И. и Пановой С.М. за усовершенствование электроники, Максимовой Н.А. и Корнилову Д.В. за работу над управляющей программой ПЛИС, Советникову Т.О. за полученные изображения черной субстанции мозга человека.
ИНФОРМАЦИЯ О РЕЦЕНЗИРОВАНИИ
Редакция благодарит анонимного рецензента (рецензентов) за их вклад в рецензирование этой работы, а также за размещение статей на сайте журнала и передачу их в электронном виде в НЭБ eLIBRARY.RU.
Декларация о конфликте интересов. Авторы заявляют об отсутствии конфликтов интересов или личных отношений, которые могли бы повлиять на работу, представленную в данной статье.
ЛИТЕРАТУРА / REFERENCES
Song Q, Alvarez-Laviada A., Schrup S.E., Reilly-O’Donnell B., Entcheva E., Gorelik J. Opto-SICM framework combines optogenetics with scanning ion conductance microscopy for probing cell-to-cell contacts. Commun Biol. 2023. Nov 8. Vol. 6(1). PP. 1131. https://doi.org/10.1038/s42003-023-05509-3
Tikhonova T.N., Kolmogorov V.S., Timoshenko R.V., Vaneev A.N., Cohen-Gerassi D., Osminkina L.A., Gorelkin P.V., Erofeev A.S., Sysoev N.N., Adler-Abramovich L. et al. Sensing Cells-Peptide Hydrogel Interaction In Situ via Scanning Ion Conductance Microscopy. Cells. 2022. Vol. 11(24). P. 4137. https://doi.org/10.3390/cells11244137
Ushiki T., Nakajima M., Choi M., Cho S.J., Iwata F. Scanning ion conductance microscopy for imaging biological samples in liquid: A comparative study with atomic force microscopy and scanning electron microscopy. Micron 2012. Vol. 43. PP. 1390–1398.
Ruan H., Zhang X., Yuan J., Fang X. Effect of water-soluble fullerenes on macrophage surface ultrastructure revealed by scanning ion conductance microscopy. RSC Ad. v. 2022. Aug 10. Vol. 12(34). PP. 22197–22201. https://doi.org/10.1039/d2ra02403a
Akhmetova A.I., Yaminsky D.I., Yaminsky I.V. Femtoscan Online: Image Processing and Filtering. NANOINDUSTRY. Vol. 17. No. 3-4. 2024. PP. 178–183. https://doi.org/10.22184/1993-8578.2024.17.3-4.178.183
Akhmetova A.I., Sovetnikov T.O., Zorikova E.O., Yaminsky I.V. Scanning probe microscopy of substantia nigra. NANOINDUSTRY. Vol. 17. No. 1. 2024. PP. 26–31. https://doi.org/10.22184/1993-8578.2024.17.1.26.31
Akhmetova A.I., Terentyev A.D., Senotrusova S.A., Sovetnikov T.O., Yaminsky D.I., Popov V.V., Yaminsky I.V. Diffraction grating as a means of metrological support of microscopy. NANOINDUSTRY. Vol. 17. No. 2. 2024. PP. 128–133. https://doi.org/
10.22184/1993-8578.2024.17.2.98.105
Akhmetova A.I., Sovetnikov T.O., Loginov B.A., Yaminsky D.I., Yaminsky I.V. Quartz reference measure for scanning probe microscopy. NANOINDUSTRY. Vol. 17. No. 2. 2024. PP. 98–105. https://doi.org/
10.22184/1993-8578.2024.17.2.98.105
Отзывы читателей
