eng
Изучена возможность повышения противоопухолевой активности гетероциклических антибиотиков за счет фото-активации их нанокомплексов с олигонуклеотидами и ДНК. В модельных опытах с растворами актиномицинов показано, что они обладают собственной фотохимической активностью. Эта активность заметно изменяется при связывании с ДНК в растворе или в опухолевых клетках. Обнаружена быстрая фотодеструкция клеток HeLa и высвобождение из них антибиотика.
Теги: 7-amino-actinomycin d 7-амино-актиномицин actinomycin anti-cancer antibiotics caffeine fluorescence hela cells nano-complexes photo-destruction актиномицин клетки hela кофеин нанокомплексы противоопухолевые антибиотики флуоресценция фотодеструкция
Материалы и методы исследования
В работе использовались АМД и 7ААМД (Reanal, Венгрия и Fluka, Швейцария), ДНК из фага лямбда (№ 25250-010 GibcoBRL, США), химически чистый кофеин. Растворы готовились на бидистиллированной воде в день опыта. Концентрация АМД и 7ААМД определялась фотометрически из коэффициента экстинкции.
Спектры поглощения используемых актиномицинов регистрировались в диапазоне 220–600 нм на спектрофотометре Specord M-40 в кюветах с оптическим путем от 0,1 до 1 см, а спектры флуоресценции 7ААМД – в диапазоне 560–790 нм (длина волны возбуждения – 530 нм) на спектрофлуориметре Perkin-Elmer MPF-44B или SLM-4800 (США) при 20°С в односантиметровых кварцевых кюветах.
Проникновение
антибиотика в клетки HeLa
Исследование проникновения микромолярных концентраций АМД и 7ААМД в модельные опухолевые клетки HeLa проводилось в "мягких" (инкубация 5 мин при 200C) и "жестких" (30 мин при 370C) условиях, соответственно. Клетки культивировались на питательной среде RPMI 1640. Средой для работы был 20-мМ трис с 200-мМ сахарозой (рН = 7,5). Образцы с антибиотиком после инкубации для осаждения клеток, в которых оставались только связанные с ними 7ААМД или АМД, центрифугировались при 600 об/мин. После этого жидкость, располагающаяся над твердым слоем, отбиралась, а осадок разбавлялся до нужной концентрации.
Фотоактивация и микроскопия
Облучение 7ААМД в растворе производилось 450-Вт ксеноновой лампой. Свет проходил через 5%-ный раствор сернокислой меди (тепловой фильтр), интерференционный светофильтр на 540 нм и нейтральный ослабляющий светофильтр НС-3. После этого он попадал на 200 мкл раствора образца, помещенного в герметично закрытую 0,4-см зеркальную микрокювету, усиливающую флуоресцентный сигнал и ускоряющую фотохимические реакции. Световой пучок проходил через весь объем раствора, нагрев которого в ходе облучения не превышал 10C. Эксперименты по фотоактивации АМД в растворе и клетках проводились с помощью той же лампы. Образцы, термостатируемые при 20°С, помещались в 1-см зеркальные кюветы и освещались через тепловой фильтр без светофильтров. Аналогичным образом облучался антибиотик, накопившийся в клетках при инкубации. Микрофотографии клеток HeLa были получены с помощью оптического микроскопа Carl Zeiss и цифровой фотокамеры Sony Cyber Shot (5 Мпикселей).
Результаты
Изучено проникновение АМД и 7ААМД в модельные опухолевые клетки HeLa. При "мягких" условиях инкубации эти антибиотики в микромолярных концентрациях плохо проникают в такие клетки. Однако в "жестких" условиях наблюдалось их хорошее проникновение. В табл.1 приведены данные по проникновению 7ААМД из раствора внутрь клеток. Видно, что в исходном растворе антибиотик присутствует, а после инкубации его практически нет. Таким образом, он почти весь входит в клетки. При этом важно отметить исходную неаддитивность его флуоресценции и фоновой интенсивности самих клеток. Это свидетельствует о том, что, находясь внутри клеток, 7ААМД излучает гораздо слабее, чем в растворе. Значит, либо он, входя в клетки, хуже поглощает возбуждающий свет, либо чем-то сильно дезактивируется в клетках. Однако когда в клетках накапливается довольно много антибиотика, он начинает флуоресцировать почти на порядок сильнее, чем в растворе.
Обнаружено, что при проникновении актиномицинов внутрь клеток они способны уменьшать триптофановую флуоресценцию клеточных белков. Данные для АМД приведены в табл.2. С целью исключения экранирования (при 295 нм) и реабсорбции (при 338 нм) триптофановой флуоресценции находящимися в растворе молекулами АМД измерения проводились на клетках, инкубированных в течение 30 мин, с их повторным переосаждением с накопившимся внутри антибиотиком. При этом, однако, нельзя исключать микроэкранировку возбуждающего света (при 295 нм) и микрореабсорбцию (при 338 нм) триптофановой флуоресценции скопившимися внутри клеток молекулами АМД. Величина таких оптических эффектов рассмотрена в [3]. Действительно, хотя коэффициент экстинкции АМД при указанных длинах волн в несколько раз ниже, чем при 445 нм, однако за счет высокого внутриклеточного концентрирования АМД (клетки при оптическом микроскопировании в проходящем свете окрашиваются в желтоватый цвет) локальные оптические плотности АМД при 295 и 338 нм суммарно составляли около 0,2 (оптическая плотность 0,2 соответствует светопропусканию 50%). Это означает, что интенсивность триптофановой флуоресценции белков должна быть снижена примерно на половину, что и наблюдалось в опыте.
Добавление в среду кофеина в миллимолярной концентрации заметно снижало этот эффект. По-видимому, избыточные кластеры кофеина в растворе сорбировали АМД, не давая ему перераспределяться к внутриклеточной ДНК и препятствуя накоплению АМД в клетках HeLa, что согласуется с результатами, полученными на дрожжевых клетках [1].
Для визуализации антибиотика в клетках оптической микроскопией и цифровой фотосъемкой зарегистрировано, что АМД или его нанокомплекс с кофеином при 20°С сорбируется на плазматической мембране клеток HeLa в течение первых 10 мин, а затем при 30-мин инкубации при комнатной температуре медленно проникает внутрь клеток.
Фотодеструкция антибиотика
АМД в нанокомплексе с ДНК обладает фотодинамической активностью: в электронно-возбужденном состоянии принимает электрон с ДНК, что приводит к генерации свободных радикалов [1]. Важно отметить, что АМД сам также обладает такой активностью. При облучении его водного раствора в зеркальной микрокювете светом 450-Вт ксеноновой лампы (с использованием 5%-ного раствора сульфата меди в качестве теплового фильтра) по фотоблэчингу (выцветанию в спектре поглощения) обнаруживается фотохимическое превращение антибиотика (рис.1).
Фотоблэчинг происходит за счет прямой фотохимической трансформации АМД и в результате его фотоокисления молекулярным или синглетным кислородом, образующимся при взаимодействии с триплетным возбужденным АМД [1]. Кофеин в миллимолекулярных концентрациях увеличивает степень фотоблэчинга АМД. Вероятно, это связано с тем, что при сорбции на поверхности кофеиновых кластеров антибиотик существенно экранирован от воды, забирающей энергию электронного возбуждения на свои колебательные моды [4].
В случае 7ААМД, при очень малых концентрациях антибиотика, выцветание проявляется в уменьшении интенсивности флуоресценции. Например, при измерениях на флуоресцентном корреляционном микроскопе ConfoCor обнаружено, что причиной этого был переход фотовозбужденных молекул 7ААМД в триплеты вследствие высокой плотности лазерного возбуждающего света [5]. При описании двухэкспоненциальной зависимости получены примерно равные компоненты с характерным временем в 2 и 34 с, т.е. 7ААМД в водном растворе существует в двух отличающихся по фотостабильности состояниях.
На рис.2 показан флуоресцентный фотоблэчинг 7ААМД в воде, измеренный в зеркальной микрокювете на обычном спектрофлуориметре. Он вряд ли вызван переходом в триплетное состояние, поскольку сохраняется в течение нескольких минут. После прерывания освещения и выдерживании пробы в темноте в течение 1 или 2 мин (20–21-я и 30–32-я мин) интенсивность флуоресценции слегка повышается и не возвращается к исходной.
При связывании с ДНК фотохимическая активность 7ААМД способна повышаться, что можно использовать в фотодинамической терапии. Наиболее фотохимически активный – нанокомплекс с фрагментированной ДНК из тимуса теленка, наименее фоточувствительный – с плазмидой pGEM3Zf(+) [5], которая в отличие от тимусной ДНК практически не содержит разрывов и расплетенных участков, фотоблэчинг по сравнению с 7ААМД в воде заметно снижается (рис.3). В первые минуты происходит заметное возрастание интенсивности, а после 5-й мин – медленное ее снижение. Возрастание вызвано, по-видимому, повышением связывания дополнительных молекул антибиотика в ходе облучения макромолекулой лямбда-ДНК. После того, как такое фотоиндуцированное связывание в основном завершается, наблюдается медленный фотоблэчинг. Не исключено, что после 5-й мин имеет место наложение процессов связывания и фотоблэчинга.
Фотодеструкция опухолевых клеток
АМД заметно способствует фотодеструкции клеток HeLa (табл.3). Без антибиотика при облучении светом (450-Вт ксеноновая лампа с тепловым фильтром) в течение 5 мин повреждается и разрушается около 20% клеток, а при проникновении внутрь их АМД – около 60%. Повреждение и разрушение клеток без антибиотика вызвано фотосенсибилизацией внутриклеточных хромофоров (флавопротеинов, цитохромов). Клетки HeLa, прокрасившиеся антибиотиком, фотосенсибилизируются молекулами АМД, "налипшими" снаружи и проникшими внутрь. При этом большинство клеток полностью разрушается.
При фотодеструкции клеток HeLa связанный с ДНК антибиотик попадает вместе с ней в раствор, и оптическая плотность повышается (табл.4). Это свидетельствует о том, что светопоглотительная способность АМД внутри клеток существенно ниже, чем в растворе. Это позволяет предположить, что в случае 7ААМД (см. табл.1) первоначально низкая интенсивность его флуоресценции в клетках вызвана слабым светопоглощением, а не тушением.
Коротковолновый сдвиг максимума поглощения АМД после фотодеструкции клеток HeLa составлял 5 нм. Так как АМД довольно гидрофобен, по-видимому, его спектр, регистрируемый после фотодеструкции клеток, обусловлен в основном связанными с ДНК молекулами антибиотика, поскольку с белками антибиотик вообще не связывается.
Интересно, что полуширина спектра АМД в клетках в исходном состоянии и после облучения заметно выше, чем в чистом водном растворе (около 70 и 100 нм, соответственно). По-видимому, это вызвано гетерогенным взаимодействием АМД с плазматической мембраной клетки, с ядерной ДНК с другими внутриклеточными структурами.
Можно предложить несколько механизмов фотодеструкции клеток HeLa. Во-первых, она происходит за счет сильного внутриклеточного неравновесного теплового нагрева при поглощении квантов света накопившимися внутри клеток молекулами АМД. Например, квант с длиной волны 450 нм при поглощении молекулой АМД будет трансформироваться в колебательную тепловую энергию 63 ккал/моль. Во-вторых, процесс протекает вследствие фотохимических реакций фотовозбужденных (триплетных) молекул антибиотика с клеточными мембранами, органеллами и ДНК. В-третьих, нельзя исключить перекисное окисление мембранных липидов, индуцируемое синглетным кислородом, генерируемым триплетным АМД.
Кофеин и актиномициновые фармакосомы
Кластеры кофеина при миллимолярных концентрациях в воде формируются спонтанно, причем каждый из них состоит из 8–12 молекул [4]. При добавлении АМД или 7ААМД к таким кластерам они сорбируются на поверхности кластеров. Эквимолярный нанокомплекс АМД с кофеином, присутствующим в микро-, а не в миллимолярной концентрации, довольно легко проникает в делящиеся клетки (сам АМД проникает хуже), поэтому блокирующее действие таких нанокомплексов на опухолевые клетки достаточно хорошо выражено. Перераспределение антибиотика к ДНК в ходе диссоциации нанокомплексов АМД/кофеин обусловлено большей прочностью комплексов АМД/ДНК и наличием в ДНК большого количества мест связывания [4, 6].
Известно, что кофеин уменьшает действие многих гетероциклических канцерогенов, в частности, бромистого этидия, вероятно, за счет образования между ними прочного интеркаляционного нанокомплекса [1]. Хотя кофеин может снижать действие гетероциклических противоопухолевых препаратов, сорбируя их и уменьшая тем самым их эффективную концентрацию в крови, однако он препятствует "размазыванию" лекарства по стенкам кровеносных сосудов и капилляров, а также существенно пролонгирует время его действия. Следует еще раз подчеркнуть, что во многих случаях важна не столько концентрация лекарственного вещества в крови, сколько его способность проникать к молекулярно-биологическим "мишеням" в раковых клетках.
При введении нанокомплексов из АМД, кофеина и олигонуклеотида HP1 мышам с саркомой продолжительность их жизни увеличивалась вдвое [1, 2]. В то же время введение антибиотика отдельно продлевало их жизнь на 1–2 дня, а введение одного олигонуклеотида или кофеина вообще не влияло на продолжительность жизни подопытных животных.
Для доставки гетероциклических антибиотиков, в частности, актиномицинов к ДНК раковых клеток был предложен способ [7] с использованием фармакосом – частиц диаметром 1–10 нм, состоящих из антибиотика, одноцепочечного шпилечного олигонуклеотида и кластера кофеина. Фармакосомы обеспечивают защиту антибиотика от сорбции на стенках кровеносных капилляров и, что очень важно, увеличивают его проникновение в опухолевые клетки. Этот подход может быть использован при лечении сарком, лимфом, меланом. Одиночные не слипающиеся фармакосомы способны легко проходить по кровеносным капиллярам, доставлять антибиотик к ДНК делящихся опухолевых клеток и успешно проникать через их плазматическую и ядерную мембраны. В заключение отметим, что использование данного способа позволит во много раз снизить лечебную концентрацию антибиотика.
В работе использовались АМД и 7ААМД (Reanal, Венгрия и Fluka, Швейцария), ДНК из фага лямбда (№ 25250-010 GibcoBRL, США), химически чистый кофеин. Растворы готовились на бидистиллированной воде в день опыта. Концентрация АМД и 7ААМД определялась фотометрически из коэффициента экстинкции.
Спектры поглощения используемых актиномицинов регистрировались в диапазоне 220–600 нм на спектрофотометре Specord M-40 в кюветах с оптическим путем от 0,1 до 1 см, а спектры флуоресценции 7ААМД – в диапазоне 560–790 нм (длина волны возбуждения – 530 нм) на спектрофлуориметре Perkin-Elmer MPF-44B или SLM-4800 (США) при 20°С в односантиметровых кварцевых кюветах.
Проникновение
антибиотика в клетки HeLa
Исследование проникновения микромолярных концентраций АМД и 7ААМД в модельные опухолевые клетки HeLa проводилось в "мягких" (инкубация 5 мин при 200C) и "жестких" (30 мин при 370C) условиях, соответственно. Клетки культивировались на питательной среде RPMI 1640. Средой для работы был 20-мМ трис с 200-мМ сахарозой (рН = 7,5). Образцы с антибиотиком после инкубации для осаждения клеток, в которых оставались только связанные с ними 7ААМД или АМД, центрифугировались при 600 об/мин. После этого жидкость, располагающаяся над твердым слоем, отбиралась, а осадок разбавлялся до нужной концентрации.
Фотоактивация и микроскопия
Облучение 7ААМД в растворе производилось 450-Вт ксеноновой лампой. Свет проходил через 5%-ный раствор сернокислой меди (тепловой фильтр), интерференционный светофильтр на 540 нм и нейтральный ослабляющий светофильтр НС-3. После этого он попадал на 200 мкл раствора образца, помещенного в герметично закрытую 0,4-см зеркальную микрокювету, усиливающую флуоресцентный сигнал и ускоряющую фотохимические реакции. Световой пучок проходил через весь объем раствора, нагрев которого в ходе облучения не превышал 10C. Эксперименты по фотоактивации АМД в растворе и клетках проводились с помощью той же лампы. Образцы, термостатируемые при 20°С, помещались в 1-см зеркальные кюветы и освещались через тепловой фильтр без светофильтров. Аналогичным образом облучался антибиотик, накопившийся в клетках при инкубации. Микрофотографии клеток HeLa были получены с помощью оптического микроскопа Carl Zeiss и цифровой фотокамеры Sony Cyber Shot (5 Мпикселей).
Результаты
Изучено проникновение АМД и 7ААМД в модельные опухолевые клетки HeLa. При "мягких" условиях инкубации эти антибиотики в микромолярных концентрациях плохо проникают в такие клетки. Однако в "жестких" условиях наблюдалось их хорошее проникновение. В табл.1 приведены данные по проникновению 7ААМД из раствора внутрь клеток. Видно, что в исходном растворе антибиотик присутствует, а после инкубации его практически нет. Таким образом, он почти весь входит в клетки. При этом важно отметить исходную неаддитивность его флуоресценции и фоновой интенсивности самих клеток. Это свидетельствует о том, что, находясь внутри клеток, 7ААМД излучает гораздо слабее, чем в растворе. Значит, либо он, входя в клетки, хуже поглощает возбуждающий свет, либо чем-то сильно дезактивируется в клетках. Однако когда в клетках накапливается довольно много антибиотика, он начинает флуоресцировать почти на порядок сильнее, чем в растворе.
Обнаружено, что при проникновении актиномицинов внутрь клеток они способны уменьшать триптофановую флуоресценцию клеточных белков. Данные для АМД приведены в табл.2. С целью исключения экранирования (при 295 нм) и реабсорбции (при 338 нм) триптофановой флуоресценции находящимися в растворе молекулами АМД измерения проводились на клетках, инкубированных в течение 30 мин, с их повторным переосаждением с накопившимся внутри антибиотиком. При этом, однако, нельзя исключать микроэкранировку возбуждающего света (при 295 нм) и микрореабсорбцию (при 338 нм) триптофановой флуоресценции скопившимися внутри клеток молекулами АМД. Величина таких оптических эффектов рассмотрена в [3]. Действительно, хотя коэффициент экстинкции АМД при указанных длинах волн в несколько раз ниже, чем при 445 нм, однако за счет высокого внутриклеточного концентрирования АМД (клетки при оптическом микроскопировании в проходящем свете окрашиваются в желтоватый цвет) локальные оптические плотности АМД при 295 и 338 нм суммарно составляли около 0,2 (оптическая плотность 0,2 соответствует светопропусканию 50%). Это означает, что интенсивность триптофановой флуоресценции белков должна быть снижена примерно на половину, что и наблюдалось в опыте.
Добавление в среду кофеина в миллимолярной концентрации заметно снижало этот эффект. По-видимому, избыточные кластеры кофеина в растворе сорбировали АМД, не давая ему перераспределяться к внутриклеточной ДНК и препятствуя накоплению АМД в клетках HeLa, что согласуется с результатами, полученными на дрожжевых клетках [1].
Для визуализации антибиотика в клетках оптической микроскопией и цифровой фотосъемкой зарегистрировано, что АМД или его нанокомплекс с кофеином при 20°С сорбируется на плазматической мембране клеток HeLa в течение первых 10 мин, а затем при 30-мин инкубации при комнатной температуре медленно проникает внутрь клеток.
Фотодеструкция антибиотика
АМД в нанокомплексе с ДНК обладает фотодинамической активностью: в электронно-возбужденном состоянии принимает электрон с ДНК, что приводит к генерации свободных радикалов [1]. Важно отметить, что АМД сам также обладает такой активностью. При облучении его водного раствора в зеркальной микрокювете светом 450-Вт ксеноновой лампы (с использованием 5%-ного раствора сульфата меди в качестве теплового фильтра) по фотоблэчингу (выцветанию в спектре поглощения) обнаруживается фотохимическое превращение антибиотика (рис.1).
Фотоблэчинг происходит за счет прямой фотохимической трансформации АМД и в результате его фотоокисления молекулярным или синглетным кислородом, образующимся при взаимодействии с триплетным возбужденным АМД [1]. Кофеин в миллимолекулярных концентрациях увеличивает степень фотоблэчинга АМД. Вероятно, это связано с тем, что при сорбции на поверхности кофеиновых кластеров антибиотик существенно экранирован от воды, забирающей энергию электронного возбуждения на свои колебательные моды [4].
В случае 7ААМД, при очень малых концентрациях антибиотика, выцветание проявляется в уменьшении интенсивности флуоресценции. Например, при измерениях на флуоресцентном корреляционном микроскопе ConfoCor обнаружено, что причиной этого был переход фотовозбужденных молекул 7ААМД в триплеты вследствие высокой плотности лазерного возбуждающего света [5]. При описании двухэкспоненциальной зависимости получены примерно равные компоненты с характерным временем в 2 и 34 с, т.е. 7ААМД в водном растворе существует в двух отличающихся по фотостабильности состояниях.
На рис.2 показан флуоресцентный фотоблэчинг 7ААМД в воде, измеренный в зеркальной микрокювете на обычном спектрофлуориметре. Он вряд ли вызван переходом в триплетное состояние, поскольку сохраняется в течение нескольких минут. После прерывания освещения и выдерживании пробы в темноте в течение 1 или 2 мин (20–21-я и 30–32-я мин) интенсивность флуоресценции слегка повышается и не возвращается к исходной.
При связывании с ДНК фотохимическая активность 7ААМД способна повышаться, что можно использовать в фотодинамической терапии. Наиболее фотохимически активный – нанокомплекс с фрагментированной ДНК из тимуса теленка, наименее фоточувствительный – с плазмидой pGEM3Zf(+) [5], которая в отличие от тимусной ДНК практически не содержит разрывов и расплетенных участков, фотоблэчинг по сравнению с 7ААМД в воде заметно снижается (рис.3). В первые минуты происходит заметное возрастание интенсивности, а после 5-й мин – медленное ее снижение. Возрастание вызвано, по-видимому, повышением связывания дополнительных молекул антибиотика в ходе облучения макромолекулой лямбда-ДНК. После того, как такое фотоиндуцированное связывание в основном завершается, наблюдается медленный фотоблэчинг. Не исключено, что после 5-й мин имеет место наложение процессов связывания и фотоблэчинга.
Фотодеструкция опухолевых клеток
АМД заметно способствует фотодеструкции клеток HeLa (табл.3). Без антибиотика при облучении светом (450-Вт ксеноновая лампа с тепловым фильтром) в течение 5 мин повреждается и разрушается около 20% клеток, а при проникновении внутрь их АМД – около 60%. Повреждение и разрушение клеток без антибиотика вызвано фотосенсибилизацией внутриклеточных хромофоров (флавопротеинов, цитохромов). Клетки HeLa, прокрасившиеся антибиотиком, фотосенсибилизируются молекулами АМД, "налипшими" снаружи и проникшими внутрь. При этом большинство клеток полностью разрушается.
При фотодеструкции клеток HeLa связанный с ДНК антибиотик попадает вместе с ней в раствор, и оптическая плотность повышается (табл.4). Это свидетельствует о том, что светопоглотительная способность АМД внутри клеток существенно ниже, чем в растворе. Это позволяет предположить, что в случае 7ААМД (см. табл.1) первоначально низкая интенсивность его флуоресценции в клетках вызвана слабым светопоглощением, а не тушением.
Коротковолновый сдвиг максимума поглощения АМД после фотодеструкции клеток HeLa составлял 5 нм. Так как АМД довольно гидрофобен, по-видимому, его спектр, регистрируемый после фотодеструкции клеток, обусловлен в основном связанными с ДНК молекулами антибиотика, поскольку с белками антибиотик вообще не связывается.
Интересно, что полуширина спектра АМД в клетках в исходном состоянии и после облучения заметно выше, чем в чистом водном растворе (около 70 и 100 нм, соответственно). По-видимому, это вызвано гетерогенным взаимодействием АМД с плазматической мембраной клетки, с ядерной ДНК с другими внутриклеточными структурами.
Можно предложить несколько механизмов фотодеструкции клеток HeLa. Во-первых, она происходит за счет сильного внутриклеточного неравновесного теплового нагрева при поглощении квантов света накопившимися внутри клеток молекулами АМД. Например, квант с длиной волны 450 нм при поглощении молекулой АМД будет трансформироваться в колебательную тепловую энергию 63 ккал/моль. Во-вторых, процесс протекает вследствие фотохимических реакций фотовозбужденных (триплетных) молекул антибиотика с клеточными мембранами, органеллами и ДНК. В-третьих, нельзя исключить перекисное окисление мембранных липидов, индуцируемое синглетным кислородом, генерируемым триплетным АМД.
Кофеин и актиномициновые фармакосомы
Кластеры кофеина при миллимолярных концентрациях в воде формируются спонтанно, причем каждый из них состоит из 8–12 молекул [4]. При добавлении АМД или 7ААМД к таким кластерам они сорбируются на поверхности кластеров. Эквимолярный нанокомплекс АМД с кофеином, присутствующим в микро-, а не в миллимолярной концентрации, довольно легко проникает в делящиеся клетки (сам АМД проникает хуже), поэтому блокирующее действие таких нанокомплексов на опухолевые клетки достаточно хорошо выражено. Перераспределение антибиотика к ДНК в ходе диссоциации нанокомплексов АМД/кофеин обусловлено большей прочностью комплексов АМД/ДНК и наличием в ДНК большого количества мест связывания [4, 6].
Известно, что кофеин уменьшает действие многих гетероциклических канцерогенов, в частности, бромистого этидия, вероятно, за счет образования между ними прочного интеркаляционного нанокомплекса [1]. Хотя кофеин может снижать действие гетероциклических противоопухолевых препаратов, сорбируя их и уменьшая тем самым их эффективную концентрацию в крови, однако он препятствует "размазыванию" лекарства по стенкам кровеносных сосудов и капилляров, а также существенно пролонгирует время его действия. Следует еще раз подчеркнуть, что во многих случаях важна не столько концентрация лекарственного вещества в крови, сколько его способность проникать к молекулярно-биологическим "мишеням" в раковых клетках.
При введении нанокомплексов из АМД, кофеина и олигонуклеотида HP1 мышам с саркомой продолжительность их жизни увеличивалась вдвое [1, 2]. В то же время введение антибиотика отдельно продлевало их жизнь на 1–2 дня, а введение одного олигонуклеотида или кофеина вообще не влияло на продолжительность жизни подопытных животных.
Для доставки гетероциклических антибиотиков, в частности, актиномицинов к ДНК раковых клеток был предложен способ [7] с использованием фармакосом – частиц диаметром 1–10 нм, состоящих из антибиотика, одноцепочечного шпилечного олигонуклеотида и кластера кофеина. Фармакосомы обеспечивают защиту антибиотика от сорбции на стенках кровеносных капилляров и, что очень важно, увеличивают его проникновение в опухолевые клетки. Этот подход может быть использован при лечении сарком, лимфом, меланом. Одиночные не слипающиеся фармакосомы способны легко проходить по кровеносным капиллярам, доставлять антибиотик к ДНК делящихся опухолевых клеток и успешно проникать через их плазматическую и ядерную мембраны. В заключение отметим, что использование данного способа позволит во много раз снизить лечебную концентрацию антибиотика.
Отзывы читателей
